操胆蛋白系列产品详细介绍-自主发布-资讯-生物在线

操胆蛋白系列产品详细介绍

作者:西安百萤生物科技有限公司 2024-06-26T00:00 (访问量:5226)

注: PE  APC 的完整操作步骤及标记方案在最后两页,如果不需要看介绍,可直接跳过

 

    (R-PE  B-PE)

  

1.从红藻中纯化

2.具有极高的发射量子产率

3.荧光团与蛋白质主链共价结合,不被淬灭

4.高水溶性

 

 R-PE     B-PE       

                              Wavelength (nm)                             Wavelerngn (mm)

R-PE    B-PE       

 

 

 

R-PE

B-PE

分子量

240,000

240,000

最大吸收

565 nm

545 nm

额外的吸收峰

498 nm

564nm

最大发射

573 nm

573 nm

消光系数(ε)

1.96x106 M-1cm-1

2.41x106 M-1cm-1

荧光量子产率(QY)

0.84

0.98

 

 

吸收比

 

A566/A280≥5.0

A566/A498<1.5

A620/A566<0.01

 

A545/A280≥5.5

A565/A496<2.7

A620/A545<0.01

 

1.  

1.从蓝藻中纯化

2.具有极高的发射量子产率

3.荧光团与蛋白质主链共价结合,不被淬灭

4.高水溶性

APC  C-PC  的区别:

APC  C-PC 的对比:

 

 

APC

C-PC

分子量

104,000

264,000

最大吸收

651nm

651nm

最大发射

662nm

647 nm

消光系数(ɛ)

7.3x105 M-1cm-1

1.53x106cm-1M-1

荧光量子产率(QY)

0.68

0.81

吸收比

A650/A620≥1.25

A650/A280≥4.5

A652/A620<0.3

A620/A280>4

 

  APC     APC        

1.APC    结构: 它具有α和β亚基,具有明显的(αβ)3 四级结构。

2.为什么要将APC     ?  :交联是为了防止APC 在稀释或暴露于变性盐(如尿素或盐酸胍) 

发生可逆解离,从而保持其结构和功能稳定。

3. 如何进行 APC 交联?

答:通过α和β亚基间的特异性交联可以阻止APC 的分解

交联比:>1.0

 

 

NaClO4

A650:A620

CL-APC

 

1.465849387

CL-APC+NaClO4

+

1.386850153/

 

 

NaClO4

A650:A620

APC

 

1.587272727

APC+NaClO4

+

0.317901235

注:图中的红色线条为没有添加NaClO4,   蓝色线条为添加了NaClO4。

图及表中信息所示, CL-APC  图中添加NaClO4  及没添加NaClO4,   吸收比没有明显变化。而在未交联的APC

中, 添加NaClO4,    得到的吸收比有非常大的变化, 因为APC加入了NaClO4  导致了它出现了解离。

2.

  

1.存在于大多数光合作用的甲藻中

2.高水溶性

3.大斯托克斯位移

 

    

 

 

PerCP

分子量

35,000

最大吸收

483nm

最大发射

676nm

消光系数(ε)

4.0x105 M-1cm-1

荧光量子产率(QY)

1.0

亮度(exQY)

4.9x105M-1cm-1

吸收比

A482/A280>4.0

 

 

 

  

1.高量子产率

2.高水溶性

3.大量结合位点

4.匹配流式细胞仪

5.大斯托克斯位移

6.制备串联染料的良好供体

 

 

  

1.高量子产率

2.高水溶性

3.大量结合位点

4.匹配流式细胞仪

5.大斯托克斯位移

6.制备串联染料的良好供体

 

4.

注1:整个缀合过程可以在一天内完成。但是,缀合前对 PE 的纯化可能需要24-48小时。除了下面列 出的材料外,您还需要浓度至少为 2 mg/ml   的抗体溶液。请您在进行PE 抗体缀合实验之前熟悉如

何使用脱盐柱以及如何获取吸光度光谱。

 2 : SMCC-PE   缀合物非常稳定 (在“交换缓冲液”中,在4C 下至少可以稳定几个月)。因此, 如果您需要节省一部分时间,可以选择同时缀合10 毫克或更多的 PE,  并将其用于几次抗体实验(在

几周内)。 SMCC-PE    的长期储存最好是作为饱和硫酸铵沉淀物。

 

  .P E   

1.将 PE 纯化。缀合前的浓度通常为 5-10  mg/ml   注意: PE  在缀合前作为 SAS  (     ) 

淀物最稳定。如果将 PE   SAS   沉淀物的形式储存,则必须在使用前进行大量纯化。

2.使用3 .5毫克R-PE 修饰每毫克lgG,    包括在缓冲液交换过程中损失的额外10%。

3. 检查 PE  的纯度和浓度,请测量280、565 和 6 2 0 nm   处的吸光度。  (1  mg/ml       PE   565nm   处的 OD   8 . 2 )  5 6 5 / 6 2 0 比 率 > 5 0 表示已充分去除污染的藻蓝蛋白;565/280 比 率 > 5 表示已充分去除所有其他蛋白质。

 

 .P E   

1.使用前在无水 DMSO   中制备 10  mg/ml      SMCC  储备溶液。

2.每毫克 PE   1 1 μlSMCC,    并进行涡旋。将反应管用铝箔包好,室温下旋转60 分钟。

3.将纯化的 PE  过凝胶过滤柱来交换缓冲液。

注意:对于失败或效果较差的结合,增加或减少 SMCC   相对于 PE   的量,可能会有所好转。

 

 . 1gG     

1.在蒸馏水中制备 1 M  DTT(15.4       mg/100       μl)  的新鲜溶液。

2.1gG  溶液浓度应为 4 mg/ml   或更高,这样效果比较好。还原几乎可以在任何缓冲液中进行; MES 磷酸盐和 TRIS    缓冲液 (pH     范围为 6 至8)已被验证可以使用。如果抗体浓度低于 2  mg/ml,   则应浓缩。缓冲液交换柱上的损失应额外增加10%。

3. DTT  配制 20 mMlgG    溶液:每毫升 IgG   溶液加入 20μ lDTT      原液并搅拌。室温下静置30

分钟,无需额外搅拌 (以尽量减少半胱氨酸再氧化为胱氨酸)。

4.将还原的lgG 通过预平衡的“交换缓冲液”过滤柱。收集0.25毫升的级分,测定蛋白浓度,并将含

有大部分lgG 的级分汇集在一起。可以通过分光光度法或比色法完成。

5.此步骤后尽快进行缀合。

注意:对于结合较差或失败的情况,降低 DTT   浓度可能会有所帮助。

 

 .进   

1.每毫克 IgG   3.2 毫克 SMCC-PE。    用铝箔包裹反应管并在室温下旋转60 分钟。注意:这些

  比 ( IgG    2 个 PE)   效果很好。对于失败或效果不佳的结合,不同的摩尔比可能会有所帮 助。

2.60 分钟后,必须去掉 lgG   上未反应的游离巯基。

3.在 1.0 ml  DMSO   中制备 10 mg  NEM  的新鲜溶液。

4.每  克 |gG  添加 34μ g(3.4μl)        室温下包裹并旋转20 分钟。

 

1.

2.60 分钟后,必须去掉 lgG   上未反应的游离巯基。

3.在 1.0 ml   DMSO  中制备 10  mg  NEM  的新鲜溶液。

4.每毫克 |gG 添加 34μ g(3.4μl)       室温下包裹并旋转20 分钟。

 

2.

 

注1:整个缀合过程可以在 一天内完成。但是,缀合前对APC 的纯化可能需要24-48小时。除了下面

列出的材料外,您还需要浓度至少为 2 mg/ml   抗体溶液。请您在进行APC 抗体缀合实验之前熟悉

如何使用脱盐柱以及如何获取吸光度光谱。

 2 : SMCC-APC    缀合物非常稳定(在“交换缓冲液”中,在4C 下至少可以稳定几个月)。因此,  如果您需要节省一部分时间,可以选择同时缀合10 毫克或更多的 APC,  并将其用于几次抗体实验(

在几周内)。 SMCC-APC     的长期储存最好是作为饱和硫酸铵沉淀物。

 

  .A  PC   

1.将 APC  纯化。缀合前的浓度通常为 5-10  mg/ml   注意 APC  在缀合前作为 SAS  (硫酸铵钠)

沉淀物最稳定。如果将 APC   SAS   沉淀物的形式储存,则必须在使用前进行大量纯化。在用每毫  1 升的“透析缓冲液”透析之前,用每毫升1 APC   PBS   进行透析2 次。

2.使用1 .7毫克APC 修饰每毫克lgG,    包括在缓冲液交换过程中损失的额外10%。

3.检查 APC  的纯度和浓度,请测量280、620和655 nm   处的吸光度。   (1 mg/ml     APC   655nm   处的 OD   5 . 9 ) 。 655/620   比  > 1 . 4 表明杂质被充分去除;  655/280    比 率 > 4 表 明所有其他蛋白质均已充分去除

  .A   PC   

1.使用前在无水 DMSO   中制备 10  mg/ml      SMCC  储备溶液。

2.每毫克 APC    6 μlSMCC,    并进行涡旋。将反应管用铝箔包好,室温下旋转60 分钟。

3.将纯化的 APC  过凝胶过滤柱来交换缓冲液。

注意:对于失败或效果较差的结合,增加或减少 SMCC   相对于 APC   量,可能会有所好转。

 

 . 1gG     

1.在蒸馏水中制备 1 M  DTT(15.4       mg/100       μl)  的新鲜溶液。

2.1gG  溶液浓度应为 4 mg/ml   或更高,这样效果比较好。还原几乎可以在任何缓冲液中进行; MES 磷酸盐和 TRIS    缓冲液 (pH     范围为 6 至8)已被验证可以使用。如果抗体浓度低于 2  mg/ml,   则应浓缩。缓冲液交换柱上的损失应额外增加10%。

3. DTT  配制 20 mMlgG    溶液:每毫升 IgG   溶液加入 20μ lDTT      原液并搅拌。室温下静置30

分钟,无需额外搅拌 (以尽量减少半胱氨酸再氧化为胱氨酸)。

4.将还原的lgG 通过预平衡的“交换缓冲液”过滤柱。收集0.25毫升的级分,测定蛋白浓度,并将含

有大部分lgG 的级分汇集在一起。可以通过分光光度法或比色法完成。

5.此步骤后尽快进行缀合。

注意:对于结合较差或失败的情况,降低 DTT  浓度可能会有所帮助。

 

 .进   

1.每毫克IgG     添加 1 . 5毫克 SMCC-APC  用铝箔包裹反应管并在室温下旋转60 分钟。注意:这    比 (  1gG  约 2 个 APC)  效果很好。对于失败或效果不佳的结合,不同的摩尔比可能会有所 帮助。

2.60 分钟后,必须去掉 lgG 上未反应的游离巯基。

3.在 1.0 ml  DMSO   中制备 10 mg  NEM  的新鲜溶液。

4.每  克 |gG  添加 34μ g(3.4μl)        室温下包裹并旋转20 分钟。

 2.60 分钟后,必须去掉 lgG   上未反应的游离巯基。

3.在 1.0 ml   DMSO  中制备 10  mg  NEM  的新鲜溶液。

4.每毫克 |gG 添加 34μ g(3.4μl)       室温下包裹并旋转20 分钟。

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